切换至 "中华医学电子期刊资源库"
高级检索
中华口腔医学研究杂志(电子版)

中华口腔医学研究杂志(电子版) ›› 2016, Vol. 10 ›› Issue (05) : 303 -308. doi: 10.3877/cma.j.issn.1674-1366.2016.05.001

所属专题： 文献；

基础研究

树脂浸润对人工龋表面硬度及变异链球菌生物膜形成的影响
苏育武1, 支清惠1, 崔添强2, 刘姗姗1, 郑军1, 林焕彩1,†()   
  1. 1. 510055　广州，中山大学光华口腔医学院·附属口腔医院，广东省口腔医学重点实验室
    2. 528000　佛山市口腔医院综合科
  • 收稿日期:2016-06-19 出版日期:2016-10-01
  • 通信作者: 林焕彩
  • 基金资助:
    广东省科技计划(2013B021800135); 广东省医学科研基金(A2013224)

Effect of resin infiltration on surface microhardness of artificial enamel lesions and Streptococcus mutans biofilm formation

Yuwu Su1, Qinghui Zhi1, Tianqiang Cui2, Shanshan Liu1, Jun Zheng1, Huancai Lin1,†()   

  1. 1. Guanghua School of Stomatology, Hospital of Stomatology, Sun Yat-sen University, Guangdong Provincial Key Laboratory of Stomatology, Guangzhou 510055, China
    2. Department of General Dentistry, Hospital of Stomatology, Foshan 528000, China
  • Received:2016-06-19 Published:2016-10-01
  • Corresponding author: Huancai Lin
  • About author:
    Corresponding author: Lin Huancai, Email:
全文 ( ) 下载PDF ( ) 导出引用
引用本文：

苏育武, 支清惠, 崔添强, 刘姗姗, 郑军, 林焕彩. 树脂浸润对人工龋表面硬度及变异链球菌生物膜形成的影响[J]. 中华口腔医学研究杂志(电子版), 2016, 10(05): 303-308.

Yuwu Su, Qinghui Zhi, Tianqiang Cui, Shanshan Liu, Jun Zheng, Huancai Lin. Effect of resin infiltration on surface microhardness of artificial enamel lesions and Streptococcus mutans biofilm formation[J]. Chinese Journal of Stomatological Research(Electronic Edition), 2016, 10(05): 303-308.

目的

研究树脂浸润技术对人工龋模型表面显微硬度（SMH）的影响及对变异链球菌生物膜的作用。

方法

收集因正畸需要拔除的无龋坏前磨牙，制取釉质块共17个，其中5个用于研究树脂浸润治疗对人工龋模型SMH的影响，每个牙块分别于脱矿前（0 h）、脱矿24 h后、树脂浸润治疗后等不同时间点测量得到3组数据，自身前后对比。余下12个用于研究树脂浸润治疗对人工龋模型表面变异链球菌生物膜生长的影响，其中6个为空白对照组、6个为树脂浸润处理组，分别在4、24 h观测菌斑生物膜情况。以维氏表面微硬度仪检测人工龋模型SMH，以激光共聚焦扫描显微镜检测人工龋模型表面菌斑生物膜生物量、厚度、活菌百分比等。数据分别以配对t检验和独立样本t检验进行统计分析。

结果

脱矿前釉质面SMH值为（316.07 ± 13.54）HV，脱矿24 h后为（22.44 ± 1.73）HV，树脂浸润治疗后为（139.45 ± 21.46）HV，两两比较差异有统计学意义（脱矿前-脱矿后t= 55.879，P<0.001；脱矿后-治疗后t=-14.400，P<0.001；脱矿前-治疗后t = 14.090，P<0.001）。变异链球菌生物膜检测中，4及24 h树脂浸润处理组生物量[（0.59 ± 0.24）、（9.53 ± 1.49）μm3/μm2]均低于空白对照组的生物量[（1.01 ± 0.30）、（15.47 ± 7.32）μm3/μm2]，差异有统计学意义（t4 h= 3.232，P4 h= 0.005；t24 h= 2.384，P24 h= 0.042）；4及24 h树脂浸润处理组活菌百分比[（48.73 ± 8.54）%、（60.49 ± 5.33）%]均高于空白对照组的活菌百分比[（31.84 ± 7.30）%、（34.87 ± 10.72）%]，差异有统计学意义（t4 h=-4.508，P4 h<0.001；t24 h=-6.419，P24 h<0.001）。树脂浸润处理组24 h生物膜厚度为（6.44 ± 1.51）μm，低于空白对照组的生物膜厚度（12.78 ± 7.17）μm，差异有统计学意义（t= 2.592，P= 0.030）。

结论

树脂浸润治疗应用于早期人工龋模型上，能明显改善脱矿牙面的SMH，具有良好的机械性能；同时具有抑制变异链球菌生物膜形成的作用。

关键词: 树脂类, 浸润, 显微硬度, 生物膜
Objective

To study the effect of resin infiltration to the surface microhardness (SMH) and Streptococcus mutans (S.mutans) adhesion of artificial caries models.

Methods

After extraction for orthodontic treatment, caries-free human premolars were cut into 17 enamel blocks. Five enamel blocks were used to study the effect of resin infiltration on SMH. Microhardness of each enamel block was detected before and after demineralization and after resin infiltration. The remaining 12 enamel blocks were demineralized and used to study the effect of resin infiltration on S.mutans adhesion. Six samples treated with resin infiltration were detected S.mutans biofilm at 4 h and 24 h, and other six samples wer referred to the blank control group. Microhardness of enamel surfaces were detected by Vicker′s microhardness tester. Biomass, thickness and percentage of live bacteria of S.mutans biofilm were detected by confocal laser scanning microscope (CLSM) . The values were analyzed by paired t test and independent t test.

Results

The mean microhardness value of enamel surfaces decreases from (316.07 ± 13.54) HV to (22.44 ± 1.73) HV after 24 hours′ demineralization, and increases to (139.45 ± 21.46) HV after resin infiltration significantly (Before demineralization-After demineralization t= 55.879, P<0.001; After demineralization-After treatment t=-14.400, P<0.001; Before demineralization-After treatment t= 14.090, P<0.001) . CLSM images showed reduced biofilm formation on resin-infiltrated specimens[ (0.59 ± 0.24) , (9.53 ± 1.49) μm3/μm2] compared to blank controls [ (1.01 ± 0.30) , (15.47 ± 7.32) μm3/μm2] both at 4 h and 24 h (t4 h= 3.232, P4 h= 0.005; t24 h= 2.384, P24 h= 0.042) , while the percentage of live bacteria in the biofilm of resin-infiltrated specimens [ (48.73 ± 8.54) %, (60.49 ± 5.33) %] was higher than that of the control [ (31.84 ± 7.30) %, (34.87 ± 10.72) %] (t4 h = -4.508, P4 h<0.001; t24 h = -6.419, P24 h<0.001) ; the thickness of biofilm of resin-infiltrated specimens at 24 h [ (6.44 ± 1.51) μm] was higher than that of the control [ (12.78 ± 7.17) μm] (t = 2.592, P = 0.030) .

Conclusion

Resin infiltration increased microhardness value of demineralized enamel lesions, which showed excellent mechanical characters, and resin infiltration can inhibit S.mutans biofilm formation.

Key words: Resins, Infiltration, Microhardness, Biofilms
图1 显微硬度计测定牙块表面显微硬度
表1 釉质表面显微硬度在不同时间点的比较（HV，±s）
时间点(Tn) 牙块数（个） 显微硬度均值
脱矿前(T1) 5 316.07 ± 13.54
脱矿24 h后(T2) 5 22.44 ± 1.73a
树脂浸润治疗后(T3) 5 139.45 ± 21.46a,b
表2 人工龋模型表面4 h细菌生物量、活菌百分比（±s）
组别 牙块数（个） 细菌生物量（μm3/μm2） 活菌百分比(%)
空白对照组 3 1.01 ± 0.30 31.84 ± 7.30
树脂浸润处理组 3 0.59 ± 0.24 48.73 ± 8.54
t值 ? 3.232 -4.508
P值 ? 0.005 0.000
表3 人工龋模型表面24 h细菌生物量、活菌百分比、细菌生物膜厚度（±s）
组别 牙块数 （个） 细菌生物量 （μm3/μm2） 活菌百分比 (%) 细菌生物膜 厚度（μm）
空白对照组 3 15.47 ± 7.32 34.87 ± 10.72 12.78 ± 7.17
树脂浸润处理组 3 9.53 ± 1.49 60.49 ± 5.33 6.44 ± 1.51
t值 ? 2.384 -6.419 2.592
P值 ? 0.042 0.000 0.030
图2 变异链球菌生物膜激光共聚焦显微镜扫描图（荧光染色）
[1]
Phark JH, Duarte S Jr, Meyer-Lueckel H，et al. Caries infiltration with resins：a novel treatment option for interproximal caries[J]. Compend Contin Educ Dent，2009，30(3):13-17.
[2]
Arnold WH, Gaengler P. Light- and electronmicroscopic study of infiltration of resin into initial caries lesions—a new methodological approach[J]. J Microsc，2012，245(1):26-33.
[3]
Martignon S, Ekstrand KR, Gomez J，et al. Infiltrating/sealing proximal caries lesions：a 3-year randomized clinical trial[J]. J Dent Res，2012，91(3):288-292.
[4]
Meyer-Lueckel H, Paris S. Infiltration of natural caries lesions with experimental resins differing in penetration coefficients and ethanol addition[J]. Caries Res，2010，44(4):408-414.
[5]
Paris S, Meyer-Lueckel H. Inhibition of caries progression by resin infiltration in situ[J]. Caries Res，2010，44(1):47-54.
[6]
Meyer-Lueckel H, Chatzidakis A, Naumann M，et al. Influence of application time on penetration of an infiltrant into natural enamel caries[J]. J Dent，2011，39(7):465-469.
[7]
Paris S, Soviero VM, Seddig S，et al. Penetration depths of an infiltrant into proximal caries lesions in primary molars after different application times in vitro[J]. Int J Paediatr Dent，2012，22(5):349-355.
[8]
Arslan S, Zorba YO, Atalay MA，et al. Effect of resin infiltration on enamel surface properties and Streptococcus mutans adhesion to artificial enamel lesions[J]. Dent Mater J，2015，34(1):25-30.
[9]
Darshan HE, Shashikiran ND. The effect of McInnes solution on enamel and the effect of Tooth mousse on bleached enamel：An in vitro study[J]. J Conserv Dent，2008，11(2):86-91.
[10]
Shajii L, Santerre JP. Effect of filler content on the profile of released biodegradation products in micro-filled bis-GMA/TEGDMA dental composite resins[J]. Biomaterials，1999，20(20):1897-1908.
[11]
Marsh PD, Bradshaw DJ. Dental plaque as a biofilm[J]. J Ind Microbiol，1995，15(3):169-175.
[12]
Quirynen M, Bollen CM. The influence of surface roughness and surface-free energy on supra- and subgingival plaque formation in man. A review of the literature[J]. J Clin Periodontol，1995，22(1):1-14.
[13]
He Z, Wang Q, Hu Y，et al. Use of the quorum sensing inhibitor furanone C-30 to interfere with biofilm formation by Streptococcus mutans and its luxS mutant strain[J]. Int J Antimicrob Agents，2012，40(1):30-35.
[14]
Ruhe ZC, Low DA, Hayes CS. Bacterial contact-dependent growth inhibition[J]. Trends Microbiol，2013，21(5):230-237.
[15]
Qi F, Kreth J, Levesque CM，et al. Peptide pheromone induced cell death of Streptococcus mutans[J]. FEMS Microbiol Lett，2005，251(2):321-326.
[1] 王亚萍, 樊菁, 侯牛牛, 凌瑞. 肿瘤浸润性淋巴细胞在HER-2阳性早期乳腺癌中的临床意义[J]. 中华乳腺病杂志(电子版), 2023, 17(04): 203-209.
[2] 韩春颖, 王婷婷, 李艳艳, 朴金霞. 子宫内膜癌患者淋巴管间隙浸润预测因素研究现状[J]. 中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2023, 19(04): 403-409.
[3] 张利, 张阳, 马菁菁, 喻哲昊, 葛亮, 孙林春. 细胞壁锚定蛋白SasX调控RNAⅢ参与金黄色葡萄球菌ST239克隆生物膜形成及致病性相关研究[J]. 中华实验和临床感染病杂志(电子版), 2023, 17(04): 252-259.
[4] 李雄雄, 周灿, 徐婷, 任予, 尚进. 初诊导管原位癌伴微浸润腋窝淋巴结转移率的Meta分析[J]. 中华普通外科学文献(电子版), 2023, 17(06): 466-474.
[5] 程非池, 邱佳辉, 郑扬, 蔡谦谦, 张人超, 裘正军, 黄陈. 神经周围浸润、淋巴脉管浸润联合肿瘤间质比对胃癌预后的预测价值[J]. 中华普通外科学文献(电子版), 2023, 17(03): 186-192.
[6] 冯冰, 邹秋果, 梁振波, 卢艳明, 曾奕, 吴淑苗. 老年非特殊型浸润性乳腺癌超声征象与分子生物学指标的临床研究[J]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2024, 18(01): 48-51.
[7] 王勇, 黄铁模, 于守君. RPS21在肝细胞癌中的表达及与免疫浸润和预后的关系研究[J]. 中华普外科手术学杂志(电子版), 2023, 17(04): 413-417.
[8] 张帅, 付海波, 魏亚元, 陈巧, 朱佳, 张志, 张晓平, 吴相柏. 腹股沟疝Lichtenstein术联合精索静脉结扎术的应用研究[J]. 中华疝和腹壁外科杂志(电子版), 2023, 17(02): 205-208.
[9] 王妮妮, 陈荣荣, 张青, 张诚实, 崔栋慧, 伍健, 雷撼, 赵云峰. 原发性肺黏液腺癌文献复习并3例报道[J]. 中华肺部疾病杂志(电子版), 2023, 16(02): 190-194.
[10] 吴琼, 朱国贞. 膜性肾病中M2巨噬细胞相关基因的生物信息学分析[J]. 中华肾病研究电子杂志, 2023, 12(03): 156-162.
[11] 程亚飞, 任长远, 李海马, 孙恺, 马亚群. FSTL1基因在胶质瘤发展中作用的研究[J]. 中华神经创伤外科电子杂志, 2023, 09(04): 206-215.
[12] 牛文博, 吴凤鹏, 刘月平, 周超熙, 张娟, 胡旭华, 李保坤, 王贵英. 新辅助放化疗对局部进展期直肠癌疗效及肿瘤免疫微环境变化的研究[J]. 中华临床医师杂志(电子版), 2023, 17(05): 519-523.
[13] 李燕, 姚毅冰, 毛志远, 于海燕, 刘昕, 樊再雯. NCAPH在肺鳞癌中表达的临床意义及与免疫微环境浸润的关系[J]. 中华临床医师杂志(电子版), 2023, 17(04): 446-454.
[14] 刘迎, 尹嫚, 杨林青, 王云飞. 子宫颈浸润性复层产黏液的癌的诊断学特征并文献复习[J]. 中华诊断学电子杂志, 2023, 11(03): 173-177.
[15] 杨锐富, 周燕斌. 主要协同转运蛋白超家族膜转运蛋白与细菌生物膜形成的相关性研究进展[J]. 中华诊断学电子杂志, 2023, 11(02): 77-81.
阅读次数
全文


摘要

版权所有 中华医学会 中华医学电子音像出版社有限责任公司  京ICP备14006079号-1  网络出版服务许可证：(署)网出证(京)字第075号